目的 建立兔体外血浆灌流的动物实验方法,用于评价一种体外血浆脂类吸附过滤器.方法 以高脂血症大耳白兔为模型动物,先后使用了2种不同面积的中空纤维型血浆分离器,通过5 mL真空采血管离心和100 mL生理盐水袋离心等方法,将血浆与血细胞分离,通过蠕动泵在体外建立血浆循环.结果 0.3 m~2的血浆分离器能够将血浆与血细胞有效分离,顺利进行血浆循环;但是,由于该型号的血浆分离器的容积过大,动物失血过多,因肺水肿等原因导敛动物死亡.0.1 m~2的小型血浆分离器不能将高脂血症动物血浆与血细胞分离;而使用采血管,采血速度不能控制,操作时间长,血细胞损失过多,动物死亡率高.利用100 mL生理盐水袋作为离心分离容器.分批采血,采用15%的枸橼酸钠溶液抗凝,离心分离血浆与血细胞,血浆进行体外循环;同时严格控制采血速度、回输速度以及抗凝条件,成功地建立了兔体外血浆灌流实验方法和方案,操作简单,动物存活率高.结论 利用100 mL生理盐水袋分批采血,离心法分离血浆与血细胞,建立血浆体外循环.操作简单,比膜血浆分离器费用低,动物存活率高,是进行血液净化相关材料评价的理想的兔体外血浆灌流模型. 血浆与血细胞分离;而使用采血管,采 速度不能控制,操作时间长,血细胞损失过多,动物死亡率高.利用100 mL生理盐水袋作为离心分离容器.分批采血,采用15%的枸橼酸钠溶液抗凝,离心分离血浆与血细胞,血浆进行体外循环;同时严格控制采血速度、回输速度以及抗凝条件,成功地建立了兔体外血浆灌流实验方法和方案,操作简单,动物存活率高.结论 利用100 mL生理盐水袋分批采血,离心法分离血浆与血细胞,建立血浆体外循环.操作简单,比膜血浆分离器费用低,动物存活率高,是进行血液净化相关材料评价的理想的兔体外血浆灌流模型. 血浆与血细胞分离;而使用采血管,采 速度不能控制,操作时间长,血细胞损失过多,动物死亡率高.利用100 mL生理盐水袋作为离心分离容器.分批采血,采用15%的枸橼酸钠溶液抗凝,离心分离血浆与血细胞,血浆进行体外循环;同时严格控制采血速度、回输速度以及抗凝条件,成功地建立了兔体外血浆灌流实验方法和方案,操作简单,动物 活率高.结论 利用100 mL生理盐水袋分批采血,离心法分离血浆与血细胞,建立血浆体外循环.操作简单,比膜血浆分离器费用低,动物存活率高,是进行血液净化相关材料评价的理想的兔体外血浆灌流模型. 血浆与血细胞分离;而使用采血管,采 速度不能控制,操作时间长,血细胞损失过多,动物死亡率高.利用100 mL生理盐水袋作为离心分离容器.分批采血,采用15%的枸橼酸钠溶液抗凝,离心分离血浆与血细胞,血浆进行体外循环;同时严格控制采血速度、回输速度以及抗凝条件,成功地建立了兔体外血浆灌流实验方法和方案,操作简单,动物 活率高.结论 利用100 mL生理盐水袋分批采血,离心法分离血浆与血细胞,建立血浆体外循环.操作简单,比膜血浆分离器费用低,动物存活率高,是进行血液净化相关材料评价的理想的兔体外血浆灌流模型. 血浆与血细胞分离;而使用采血管,采 速度不能控制,操作时间长,血细胞损失过多,动物死亡率高.利用100 mL生理盐水袋作为离心分离容器.分批采血,采用15%的枸橼酸钠溶液抗凝,离心分离血浆与血细胞,血浆进行体外循环;同时严格控制采血速度、回输速度以及抗凝条件,成功地建立了兔体外血浆灌流实验方法和方案,操作简单,动物 活率高.结论 利用100 mL生理盐水袋分批采血,离心法分离血浆与血细胞,建立血浆体外循环.操作简单,比膜血浆分离器费用低,动物存活率高,是进行血液净化相关材料评价的理想的兔体外血浆灌流模型. 血浆与血细胞分离;而使用采血管,采 速度不能控制,操作时间长,血细胞损失过多,动物死亡率高.利用100 mL生理盐水袋作为离心分离容器.分批采血,采用15%的枸橼酸钠溶液抗凝,离心分离血浆与血细胞,血浆进行体外循环;同时严格控制采血速度、回输速度以及抗凝条件,成功地建立了兔体外血浆灌流实验方法和方案,操作简单
目的 建立兔體外血漿灌流的動物實驗方法,用于評價一種體外血漿脂類吸附過濾器.方法 以高脂血癥大耳白兔為模型動物,先後使用瞭2種不同麵積的中空纖維型血漿分離器,通過5 mL真空採血管離心和100 mL生理鹽水袋離心等方法,將血漿與血細胞分離,通過蠕動泵在體外建立血漿循環.結果 0.3 m~2的血漿分離器能夠將血漿與血細胞有效分離,順利進行血漿循環;但是,由于該型號的血漿分離器的容積過大,動物失血過多,因肺水腫等原因導斂動物死亡.0.1 m~2的小型血漿分離器不能將高脂血癥動物血漿與血細胞分離;而使用採血管,採血速度不能控製,操作時間長,血細胞損失過多,動物死亡率高.利用100 mL生理鹽水袋作為離心分離容器.分批採血,採用15%的枸櫞痠鈉溶液抗凝,離心分離血漿與血細胞,血漿進行體外循環;同時嚴格控製採血速度、迴輸速度以及抗凝條件,成功地建立瞭兔體外血漿灌流實驗方法和方案,操作簡單,動物存活率高.結論 利用100 mL生理鹽水袋分批採血,離心法分離血漿與血細胞,建立血漿體外循環.操作簡單,比膜血漿分離器費用低,動物存活率高,是進行血液淨化相關材料評價的理想的兔體外血漿灌流模型. 血漿與血細胞分離;而使用採血管,採 速度不能控製,操作時間長,血細胞損失過多,動物死亡率高.利用100 mL生理鹽水袋作為離心分離容器.分批採血,採用15%的枸櫞痠鈉溶液抗凝,離心分離血漿與血細胞,血漿進行體外循環;同時嚴格控製採血速度、迴輸速度以及抗凝條件,成功地建立瞭兔體外血漿灌流實驗方法和方案,操作簡單,動物存活率高.結論 利用100 mL生理鹽水袋分批採血,離心法分離血漿與血細胞,建立血漿體外循環.操作簡單,比膜血漿分離器費用低,動物存活率高,是進行血液淨化相關材料評價的理想的兔體外血漿灌流模型. 血漿與血細胞分離;而使用採血管,採 速度不能控製,操作時間長,血細胞損失過多,動物死亡率高.利用100 mL生理鹽水袋作為離心分離容器.分批採血,採用15%的枸櫞痠鈉溶液抗凝,離心分離血漿與血細胞,血漿進行體外循環;同時嚴格控製採血速度、迴輸速度以及抗凝條件,成功地建立瞭兔體外血漿灌流實驗方法和方案,操作簡單,動物 活率高.結論 利用100 mL生理鹽水袋分批採血,離心法分離血漿與血細胞,建立血漿體外循環.操作簡單,比膜血漿分離器費用低,動物存活率高,是進行血液淨化相關材料評價的理想的兔體外血漿灌流模型. 血漿與血細胞分離;而使用採血管,採 速度不能控製,操作時間長,血細胞損失過多,動物死亡率高.利用100 mL生理鹽水袋作為離心分離容器.分批採血,採用15%的枸櫞痠鈉溶液抗凝,離心分離血漿與血細胞,血漿進行體外循環;同時嚴格控製採血速度、迴輸速度以及抗凝條件,成功地建立瞭兔體外血漿灌流實驗方法和方案,操作簡單,動物 活率高.結論 利用100 mL生理鹽水袋分批採血,離心法分離血漿與血細胞,建立血漿體外循環.操作簡單,比膜血漿分離器費用低,動物存活率高,是進行血液淨化相關材料評價的理想的兔體外血漿灌流模型. 血漿與血細胞分離;而使用採血管,採 速度不能控製,操作時間長,血細胞損失過多,動物死亡率高.利用100 mL生理鹽水袋作為離心分離容器.分批採血,採用15%的枸櫞痠鈉溶液抗凝,離心分離血漿與血細胞,血漿進行體外循環;同時嚴格控製採血速度、迴輸速度以及抗凝條件,成功地建立瞭兔體外血漿灌流實驗方法和方案,操作簡單,動物 活率高.結論 利用100 mL生理鹽水袋分批採血,離心法分離血漿與血細胞,建立血漿體外循環.操作簡單,比膜血漿分離器費用低,動物存活率高,是進行血液淨化相關材料評價的理想的兔體外血漿灌流模型. 血漿與血細胞分離;而使用採血管,採 速度不能控製,操作時間長,血細胞損失過多,動物死亡率高.利用100 mL生理鹽水袋作為離心分離容器.分批採血,採用15%的枸櫞痠鈉溶液抗凝,離心分離血漿與血細胞,血漿進行體外循環;同時嚴格控製採血速度、迴輸速度以及抗凝條件,成功地建立瞭兔體外血漿灌流實驗方法和方案,操作簡單
목적 건립토체외혈장관류적동물실험방법,용우평개일충체외혈장지류흡부과려기.방법 이고지혈증대이백토위모형동물,선후사용료2충불동면적적중공섬유형혈장분리기,통과5 mL진공채혈관리심화100 mL생리염수대리심등방법,장혈장여혈세포분리,통과연동빙재체외건립혈장순배.결과 0.3 m~2적혈장분리기능구장혈장여혈세포유효분리,순리진행혈장순배;단시,유우해형호적혈장분리기적용적과대,동물실혈과다,인폐수종등원인도렴동물사망.0.1 m~2적소형혈장분리기불능장고지혈증동물혈장여혈세포분리;이사용채혈관,채혈속도불능공제,조작시간장,혈세포손실과다,동물사망솔고.이용100 mL생리염수대작위리심분리용기.분비채혈,채용15%적구연산납용액항응,리심분리혈장여혈세포,혈장진행체외순배;동시엄격공제채혈속도、회수속도이급항응조건,성공지건립료토체외혈장관류실험방법화방안,조작간단,동물존활솔고.결론 이용100 mL생리염수대분비채혈,리심법분리혈장여혈세포,건립혈장체외순배.조작간단,비막혈장분리기비용저,동물존활솔고,시진행혈액정화상관재료평개적이상적토체외혈장관류모형. 혈장여혈세포분리;이사용채혈관,채 속도불능공제,조작시간장,혈세포손실과다,동물사망솔고.이용100 mL생리염수대작위리심분리용기.분비채혈,채용15%적구연산납용액항응,리심분리혈장여혈세포,혈장진행체외순배;동시엄격공제채혈속도、회수속도이급항응조건,성공지건립료토체외혈장관류실험방법화방안,조작간단,동물존활솔고.결론 이용100 mL생리염수대분비채혈,리심법분리혈장여혈세포,건립혈장체외순배.조작간단,비막혈장분리기비용저,동물존활솔고,시진행혈액정화상관재료평개적이상적토체외혈장관류모형. 혈장여혈세포분리;이사용채혈관,채 속도불능공제,조작시간장,혈세포손실과다,동물사망솔고.이용100 mL생리염수대작위리심분리용기.분비채혈,채용15%적구연산납용액항응,리심분리혈장여혈세포,혈장진행체외순배;동시엄격공제채혈속도、회수속도이급항응조건,성공지건립료토체외혈장관류실험방법화방안,조작간단,동물 활솔고.결론 이용100 mL생리염수대분비채혈,리심법분리혈장여혈세포,건립혈장체외순배.조작간단,비막혈장분리기비용저,동물존활솔고,시진행혈액정화상관재료평개적이상적토체외혈장관류모형. 혈장여혈세포분리;이사용채혈관,채 속도불능공제,조작시간장,혈세포손실과다,동물사망솔고.이용100 mL생리염수대작위리심분리용기.분비채혈,채용15%적구연산납용액항응,리심분리혈장여혈세포,혈장진행체외순배;동시엄격공제채혈속도、회수속도이급항응조건,성공지건립료토체외혈장관류실험방법화방안,조작간단,동물 활솔고.결론 이용100 mL생리염수대분비채혈,리심법분리혈장여혈세포,건립혈장체외순배.조작간단,비막혈장분리기비용저,동물존활솔고,시진행혈액정화상관재료평개적이상적토체외혈장관류모형. 혈장여혈세포분리;이사용채혈관,채 속도불능공제,조작시간장,혈세포손실과다,동물사망솔고.이용100 mL생리염수대작위리심분리용기.분비채혈,채용15%적구연산납용액항응,리심분리혈장여혈세포,혈장진행체외순배;동시엄격공제채혈속도、회수속도이급항응조건,성공지건립료토체외혈장관류실험방법화방안,조작간단,동물 활솔고.결론 이용100 mL생리염수대분비채혈,리심법분리혈장여혈세포,건립혈장체외순배.조작간단,비막혈장분리기비용저,동물존활솔고,시진행혈액정화상관재료평개적이상적토체외혈장관류모형. 혈장여혈세포분리;이사용채혈관,채 속도불능공제,조작시간장,혈세포손실과다,동물사망솔고.이용100 mL생리염수대작위리심분리용기.분비채혈,채용15%적구연산납용액항응,리심분리혈장여혈세포,혈장진행체외순배;동시엄격공제채혈속도、회수속도이급항응조건,성공지건립료토체외혈장관류실험방법화방안,조작간단
Objective This study aims to establish an excorporeal plasma perfusion method for rabbit ex-periment to evaluate an extracorporeal lipoprotein adsorption filter. Methods Hypercholesterol rabbits were used in this study. In order to separate the plasma from the blood cells, two types of disposable membrane plasma-separators, namely 5 mL vacutainers and 100 mL saline bags, were tried. The separated plasma was pumped thor-ough the lipoprotein adsorption filter and an excorporeal plasma perfusion circle was set up. Results The 0.3 m~2 membrane plasma-separators could effectively separate plasma from the blood cells, and the perfusion was carried out smoothly. However, since the volume of the plasma-separators was too big for rabbit, the animals could not tolerate a large amount of blood circulating out of the body and died mostly of pneumonedema. The use of 0.1 m~2 membrane plasma-separators did not cause death of animals, but it could not separate plasma from the blood cells. In the vacutainer method, it was not easy to control the speed of blood taking. Collecting plasma and blood cells from the tubes were time-consuming and loss blood cells. The mortality was 50% when using the vacutainer method. In the saline bag method, blood was taken at a constant speed into the bag. Citric acid solution(15%) was used as the anticoagulant. After centrifugation, the supernatant plasma in the bag could be easily transferred into another container for excorporeal perfusion without loss of blood components. With this method, the speed of blood taking and infusion could be well controlled, and rabbit excorporeal plasma perfusion was successfully es-tablished. The procedure was easy to handle and the survival rate was high. Conclusion Using 100 mL saline bags for blood taking and centrifugation, rabbit plasma was separated from the blood ceils and an excorporeal plasma perfusion circle was established. This method is cost-effective with high survival rate. It may make the rabbit excorporeal plasma perfusion available and useful for pre-clinical evaluation of blood purification materials or devices.
