中国修复重建外科杂志
中國脩複重建外科雜誌
중국수복중건외과잡지
CHINESE JOURNAL OF REPARATIVE AND RECONSTRUCTIVE SURGERY
2008年
2期
167-172
,共6页
赵其纯%蔡道章%王其友%刘斌%陈竹生
趙其純%蔡道章%王其友%劉斌%陳竹生
조기순%채도장%왕기우%류빈%진죽생
组织工程%聚羟基丁酸-羟基异戊酯%BMSCs%光接枝反应改性%支架材料
組織工程%聚羥基丁痠-羥基異戊酯%BMSCs%光接枝反應改性%支架材料
조직공정%취간기정산-간기이무지%BMSCs%광접지반응개성%지가재료
目的 评价光接枝改性对聚羟基丁酸-羟基异戊酯(copolymers of 3-hydroxybutyrate and 3-hy-droxyvalerate,PHBV)与绵羊BMSCs相容性的影响. 方法 取6月龄雄性绵羊1只,体重17 kg,髂后棘穿刺抽取骨髓,全骨髓贴壁培养法分离培养BMSCs.制备PHBV膜、光接枝PHBV膜、PHBV支架及光接枝PHBV支架.取第3代BMSCs以1 ×105/mL接种至培养板,分别与PHBV膜和光接枝PHBV膜复合培养,接种后1、2、6 h计算细胞在两种膜上的黏附率;另将BMSCs以1×104/孔接种于两种膜上,接种后6 h、3 d及1、3周取材,扫描电镜观察细胞在两种膜上的生长情况;另将BMSCs以2×105/孔接种于两种支架上,接种后3 d及1、3周取材,扫描电镜观察细胞在两种支架上的生长情况;再将BMSCs以2 × 104/孔接种于两种膜上,5 d后收集细胞,流式细胞仪分析细胞周期;再将BMSCs以1 ×107/孔接种于两种支架上,接种后4、8、12d测定细胞内蛋白质和DNA含量. 结果 接种后1 h,PHBV膜上的细胞黏附率为37.5%±5.3%,光接枝PHBV膜为52.7%±6.0%,二者比较差异有统计学意义(P＜0.05);接种后2、6 h,两种支架上的细胞黏附率比较差异无统计学意义(P＞0.05).扫描电镜观察:光接枝PHBV膜以及光接枝PHBV支架上的细胞黏附较早,接种后1周两种材料上的细胞数较多,且细胞分泌物亦较多.流式细胞仪检测见两种膜上的BMSCs均为正常二倍体细胞,未见异倍体细胞,细胞周期和增殖指数比较差异均无统计学意义(P＞0.05).BMSCs接种至两种支架上4、8、12 d,细胞内DNA、蛋白质含量比较差异均无统计学意义(P＞0.05). 结论 光接枝表面改性增强了PHBV对绵羊BMSCs的早期吸附,改善了其生物相容性.
目的 評價光接枝改性對聚羥基丁痠-羥基異戊酯(copolymers of 3-hydroxybutyrate and 3-hy-droxyvalerate,PHBV)與綿羊BMSCs相容性的影響. 方法 取6月齡雄性綿羊1隻,體重17 kg,髂後棘穿刺抽取骨髓,全骨髓貼壁培養法分離培養BMSCs.製備PHBV膜、光接枝PHBV膜、PHBV支架及光接枝PHBV支架.取第3代BMSCs以1 ×105/mL接種至培養闆,分彆與PHBV膜和光接枝PHBV膜複閤培養,接種後1、2、6 h計算細胞在兩種膜上的黏附率;另將BMSCs以1×104/孔接種于兩種膜上,接種後6 h、3 d及1、3週取材,掃描電鏡觀察細胞在兩種膜上的生長情況;另將BMSCs以2×105/孔接種于兩種支架上,接種後3 d及1、3週取材,掃描電鏡觀察細胞在兩種支架上的生長情況;再將BMSCs以2 × 104/孔接種于兩種膜上,5 d後收集細胞,流式細胞儀分析細胞週期;再將BMSCs以1 ×107/孔接種于兩種支架上,接種後4、8、12d測定細胞內蛋白質和DNA含量. 結果 接種後1 h,PHBV膜上的細胞黏附率為37.5%±5.3%,光接枝PHBV膜為52.7%±6.0%,二者比較差異有統計學意義(P＜0.05);接種後2、6 h,兩種支架上的細胞黏附率比較差異無統計學意義(P＞0.05).掃描電鏡觀察:光接枝PHBV膜以及光接枝PHBV支架上的細胞黏附較早,接種後1週兩種材料上的細胞數較多,且細胞分泌物亦較多.流式細胞儀檢測見兩種膜上的BMSCs均為正常二倍體細胞,未見異倍體細胞,細胞週期和增殖指數比較差異均無統計學意義(P＞0.05).BMSCs接種至兩種支架上4、8、12 d,細胞內DNA、蛋白質含量比較差異均無統計學意義(P＞0.05). 結論 光接枝錶麵改性增彊瞭PHBV對綿羊BMSCs的早期吸附,改善瞭其生物相容性.
목적 평개광접지개성대취간기정산-간기이무지(copolymers of 3-hydroxybutyrate and 3-hy-droxyvalerate,PHBV)여면양BMSCs상용성적영향. 방법 취6월령웅성면양1지,체중17 kg,가후극천자추취골수,전골수첩벽배양법분리배양BMSCs.제비PHBV막、광접지PHBV막、PHBV지가급광접지PHBV지가.취제3대BMSCs이1 ×105/mL접충지배양판,분별여PHBV막화광접지PHBV막복합배양,접충후1、2、6 h계산세포재량충막상적점부솔;령장BMSCs이1×104/공접충우량충막상,접충후6 h、3 d급1、3주취재,소묘전경관찰세포재량충막상적생장정황;령장BMSCs이2×105/공접충우량충지가상,접충후3 d급1、3주취재,소묘전경관찰세포재량충지가상적생장정황;재장BMSCs이2 × 104/공접충우량충막상,5 d후수집세포,류식세포의분석세포주기;재장BMSCs이1 ×107/공접충우량충지가상,접충후4、8、12d측정세포내단백질화DNA함량. 결과 접충후1 h,PHBV막상적세포점부솔위37.5%±5.3%,광접지PHBV막위52.7%±6.0%,이자비교차이유통계학의의(P＜0.05);접충후2、6 h,량충지가상적세포점부솔비교차이무통계학의의(P＞0.05).소묘전경관찰:광접지PHBV막이급광접지PHBV지가상적세포점부교조,접충후1주량충재료상적세포수교다,차세포분비물역교다.류식세포의검측견량충막상적BMSCs균위정상이배체세포,미견이배체세포,세포주기화증식지수비교차이균무통계학의의(P＞0.05).BMSCs접충지량충지가상4、8、12 d,세포내DNA、단백질함량비교차이균무통계학의의(P＞0.05). 결론 광접지표면개성증강료PHBV대면양BMSCs적조기흡부,개선료기생물상용성.
