中国动物传染病学报
中國動物傳染病學報
중국동물전염병학보
CHINESE JOURNAL OF VETERINARY PARASITOLOGY
2014年
4期
29-34
,共6页
温肖会%蔡春梅%魏文康%翟少伦%吕殿红%贾春玲%袁洁%黄忠%周秀蓉
溫肖會%蔡春梅%魏文康%翟少倫%呂殿紅%賈春玲%袁潔%黃忠%週秀蓉
온초회%채춘매%위문강%적소륜%려전홍%가춘령%원길%황충%주수용
H1N1亚型猪流感%双重RT-PCR方法%HA基因%NA基因
H1N1亞型豬流感%雙重RT-PCR方法%HA基因%NA基因
H1N1아형저류감%쌍중RT-PCR방법%HA기인%NA기인
H1N1 subtype Swine influenza virus%double RT-PCR%HA gene%NA gene
为了建立适用于临床诊断的H1N1亚型猪流感病毒快速检测方法,本研究根据GenBank已登录的H1N1亚型猪流感病毒HA和NA基因序列设计RT-PCR扩增引物,以H1N1亚型猪流感病毒、H3N2亚型猪流感病毒、猪瘟病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒为试验对照,通过优化RT-PCR反应条件和反应体系,建立了H1N1亚型猪流感病毒HA和NA基因双重RT-PCR定型检测方法。同时,运用H1N1亚型猪流感病毒血凝和血凝抑制试验方法和本研究建立的方法对165份猪病料样品进行了对比验证。结果表明,本研究建立的H1N1亚型猪流感病毒双重RT-PCR具有良好的特异性、敏感性、重复性,所扩增的目的基因片段大小分别为428 bp和678 bp左右,可检出最小基因组RNA浓度为2.9×10-5μg/μL。本研究建立的方法和H1N1亚型猪流感病毒血凝和血凝抑制试验方法均从同一份猪肺脏样品中检测出H1N1亚型猪流感病毒,其余样品中均未检出H1N1亚型猪流感病毒,两种方法符合率为100%。本研究建立的方法适用于H1N1亚型猪流感病毒双基因定型检测,可在H1N1亚型猪流感病毒流行病学调查和临床诊断中应用。
為瞭建立適用于臨床診斷的H1N1亞型豬流感病毒快速檢測方法,本研究根據GenBank已登錄的H1N1亞型豬流感病毒HA和NA基因序列設計RT-PCR擴增引物,以H1N1亞型豬流感病毒、H3N2亞型豬流感病毒、豬瘟病毒和豬繁殖與呼吸綜閤徵病毒為試驗對照,通過優化RT-PCR反應條件和反應體繫,建立瞭H1N1亞型豬流感病毒HA和NA基因雙重RT-PCR定型檢測方法。同時,運用H1N1亞型豬流感病毒血凝和血凝抑製試驗方法和本研究建立的方法對165份豬病料樣品進行瞭對比驗證。結果錶明,本研究建立的H1N1亞型豬流感病毒雙重RT-PCR具有良好的特異性、敏感性、重複性,所擴增的目的基因片段大小分彆為428 bp和678 bp左右,可檢齣最小基因組RNA濃度為2.9×10-5μg/μL。本研究建立的方法和H1N1亞型豬流感病毒血凝和血凝抑製試驗方法均從同一份豬肺髒樣品中檢測齣H1N1亞型豬流感病毒,其餘樣品中均未檢齣H1N1亞型豬流感病毒,兩種方法符閤率為100%。本研究建立的方法適用于H1N1亞型豬流感病毒雙基因定型檢測,可在H1N1亞型豬流感病毒流行病學調查和臨床診斷中應用。
위료건립괄용우림상진단적H1N1아형저류감병독쾌속검측방법,본연구근거GenBank이등록적H1N1아형저류감병독HA화NA기인서렬설계RT-PCR확증인물,이H1N1아형저류감병독、H3N2아형저류감병독、저온병독화저번식여호흡종합정병독위시험대조,통과우화RT-PCR반응조건화반응체계,건립료H1N1아형저류감병독HA화NA기인쌍중RT-PCR정형검측방법。동시,운용H1N1아형저류감병독혈응화혈응억제시험방법화본연구건립적방법대165빈저병료양품진행료대비험증。결과표명,본연구건립적H1N1아형저류감병독쌍중RT-PCR구유량호적특이성、민감성、중복성,소확증적목적기인편단대소분별위428 bp화678 bp좌우,가검출최소기인조RNA농도위2.9×10-5μg/μL。본연구건립적방법화H1N1아형저류감병독혈응화혈응억제시험방법균종동일빈저폐장양품중검측출H1N1아형저류감병독,기여양품중균미검출H1N1아형저류감병독,량충방법부합솔위100%。본연구건립적방법괄용우H1N1아형저류감병독쌍기인정형검측,가재H1N1아형저류감병독류행병학조사화림상진단중응용。
To develop a reliable diagnostic method for H1N1 subtype Swine influenza virus, double RT-PCR methods were developed using primers designed according to the sequences of HA and NA genes of H1N1 Subtype swine influenza virus in GenBank. The amplified gene fragments were 428 bp for HA and 678 bp for NA. The reaction conditions were optimized and minimal detectable RNA concentration was 2.9×10-5μg/μL. Meanwhile, the method had no reaction with H3N2 subtype Swine influenza virus, classical Swine fever virus and Porcine reproductive and respiratory syndrome virus. This method developed here is suitable for double gene typing detection and also for early diagnosis and epidemiological investigation of H1N1 subtype Swine influenza virus.